■ RESUMO A cutis verticis gyrata é uma moléstia que se caracteriza pela hipertrofia da pele do couro cabeludo, levando à formação de dobras e saculações que se assemelham aos giros do córtex cerebral. Acomete mais comumente o sexo masculino e se desenvolve após a puberdade. Pode ocorrer isoladamente ou em associação com uma variedade de condições e tratamentos subjacentes, incluindo distúrbios neuropsiquiátricos, anormalidades oculares ou condições inflamatórias. O manejo da doença pode incluir desde conduta conservadora com a assepsia correta das áreas de dobras bem como cirurgia, se solicitado por razões psicológicas ou estéticas. O presente estudo tem por objetivo relatar o caso de um paciente adulto com cutis verticis gyrata submetido a tratamento cirúrgico para ressecção completa da lesão, seguida de reconstrução com retalhos cutâneos e realização de enxertias seriadas, juntamente com curativo por pressão negativa a vácuo.

■ ABSTRACT Cutis verticis gyrata is a disease characterized by hypertrophy of the skin on the scalp, leading to the formation of folds and sacculations that resemble the gyrus of the cerebral cortex. It most commonly affects males and develops after puberty. It can occur alone or in association with various underlying conditions and treatments, including neuropsychiatric disorders, eye abnormalities, or inflammatory conditions. The disease management can range from conservative conduct with correct asepsis of the areas of folds and surgery if requested for psychological or aesthetic reasons. The present study aims to report the case of an adult patient with cutis verticis gyrata who underwent surgical treatment for complete resection of the lesion, followed by reconstruction with skin flaps and serial grafting, together with a vacuum negative pressure dressing.

Um método para determinação de aflatoxina M1 em leite empregando cromatografia em camada delgada foi otimizado e validado por procedimentos intralaboratoriais. Foram realizados testes para otimização das etapas de extração, purificação, detecção e quantificação por análise visual e densitométrica. Para validação do método foram realizados ensaios de recuperação com soluções padrões e amostras artificialmente contaminadas em níveis entre 0,027µg/L e 0,970µg/L. Foram avaliados linearidade, especificidade, exatidão, precisão, limites de detecção e quantificação. Os valores de porcentagem de recuperação na faixa de quantificação do método variaram de 84,2% a 99,0% na análise visual e de 85,2% a 105,2% na análise densitométrica, com coeficientes de variação de 2,3% a 9,8% e de 3,6% a 13,9%, respectivamente. O limite de detecção foi de 0,036µg/L e o de quantificação de 0,045µg/L, contemplando os níveis de tolerância estabelecidos na legislação nacional e internacional para aflatoxina M1 em leite.

A method for aflatoxin M1 determination in milk by thin layer chromatography was otimized and in house validated. Steps of extraction, clean-up, detection and quantification by visual and densitometric analysis were standardized. In method validation were employed standard solutions and spiked samples in levels varying from 0.027µg/L to 0.970µg/L. Linearity, specificity, trueness, precision, detection and quantification limits were the parameters evaluated. Average recovery values in quantification range were from 84.2% to 99.0% for visual analysis and from 85.2% to 105.2% for densitometric analysis, with CVs values from 2.3% to 9.8% and from 3.6% to 13.9%, respectively. The detection limit was 0.036µg/L and the quantification 0.045µg/L, according to national and international regulations for aflatoxin M1 in milk.

Um método para determinação de aflatoxinas B1 (AFB1), B2 (AFB2),G1 (AFG1) eG2 (AFG2) em milho utilizando florisil na etapa de purificação foi otimizado com vistas a cromatografia em camada delgada (CCD) unidimensional com quantificação visual e densitométrica. As aflatoxinas foram extraídas com solução de clorofórmio: água (30:1, v/v), purificada em cartuchos de florisil, separada em placas cromatográfica de sílicagel, detectadas e quantificadas por análise visual e densitométrica. As características do método foram determinadas utilizando amostras de milho natural e artificialmente contaminadas e material de referência certificado. Os valores de recuperação média para cada aflatoxina obtidos na faixa de 1,0 a 242 µg/kg para AFB1, 0,3 a 85mg/kg para AFB2, 0,6 a 148 mg/kg para AFG1 e 0,6 a 140mg/kg para AFG2 foram respectivamente 94,2; 81,9 93,5 e 97,3% por análise densitométrica. As correlações obtidas entre análise visual e densitométrica para amostras artificialmente contaminadas foram maiores que 0,99 para AFB1, AFB2, AFG1 e 0,98 para AFG2. Os desvios padrão relativos (DPR) médios, para amostras artificialmente contaminadas foram 16,2; 20,6; 12,8 e 16,9% para AFB1, AFB2, AFG1 e AFG2, respectivamente. O DPR do método, determinado usando amostra naturalmente contaminada (n = 5) foi 16,8% para AFB1 e 27,2% para AFB2. Os limites de detecção do método foram 0,2; 0,1; 0,1 e 0,1mg/kg e os limites de quantificação foram 1,0; 0,3; 0,6 e 0,6mg/kg para AFB1, AFB2, AFG1 e AFG2, respectivamente.

A method for determining aflatoxins B1 (AFB1), B2 (AFB2),G1 (AFG1) andG2 (AFG2) in maize with florisil clean up was optimised aiming at one-dimensional thin layer chromatography (TLC) analysis with visual and densitometric quantification. Aflatoxins were extracted with chloroform: water (30:1, v/v), purified through florisil cartridges, separated on TLC plate, detected and quantified by visual and densitometric analysis. The in-house method performance characteristics were determined by using spiked, naturally contaminated maize samples, and certified reference material. The mean recoveries for aflatoxins were 94.2, 81.9, 93.5 and 97.3% in the range of 1.0 to 242 µg/kg for AFB1, 0.3 to 85mg/kg for AFB2, 0.6 to 148mg/kg for AFG1 and 0.6 to 140mg/kg for AFG2, respectively. The correlation values between visual and densitometric analysis for spiked samples were higher than 0.99 for AFB1, AFB2, AFG1 and 0.98 for AFG2. The mean relative standard deviations (RSD) for spiked samples were 16.2, 20.6, 12.8 and 16.9% for AFB1, AFB2, AFG1 and AFG2, respectively. The RSD of the method for naturally contaminated sample (n = 5) was 16.8% for AFB1 and 27.2% for AFB2. The limits of detection of the method (LD) were 0.2, 0.1, 0.1 and 0.1mg/kg and the limits of quantification (LQ) were 1.0, 0.3, 0.6 and 0.6mg/kg for AFB1, AFB2, AFG1 and AFG2, respectively.